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      新聞資訊
      蛋白質純化方法及原理(蛋白質純化的基本步驟及原則)
      標簽:     添加時間:2022-10-15 瀏覽次數:7662

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      蛋白質純化方法及原理(蛋白質純化的基本步驟及原則)


        蛋白純化技術是生物研究領域的一項重要技術。要研究某一個特殊蛋白質,首先就要將這個蛋白從生物體中分離純化出來。蛋白純化方法主要是利用不同蛋白質間的相似性與差異,依據蛋白間的相似性可以去除非蛋白物質,再根據蛋白質的差異性將目的蛋白分離出來。在本文中,我們將介紹2種常用的蛋白純化的方法。

        1、自制的簡易柱子,直徑約為1cm,長度約為2cm,在柱子的下端加入蒸餾水,并關閉柱子的出口。

        2、將瓊脂糖凝膠倒入柱子,讓填料自然沉降,依次用二到五倍的柱子體積的無菌水、8mol/L的尿素、無菌水洗柱子。

        3、緩慢加入5ml的硫酸鎳,至柱子的顏色由白色變為藍色,待藍綠色收集液體滴下來為止。

        4、用二到五倍體積的PBS緩沖液平衡柱子,再將粗蛋白樣品進行上樣,用梯度濃度50mmol/L、70mmol/L、150mmol/L、250mmol/L咪唑進行過柱,流速約為1ml/min。

        5、以每個濃度用1.5ml的Eppendorf收集八管,再用二到五倍體積的無菌水洗柱子,再用二到五倍的50mmol/L的EDTA洗柱子,除去NiSO4,待至無色狀態

        6、用多倍體積的無菌水進行洗柱子,將手機液10%的分離膠進行SDS—PAGE分析。

        離子交換層析

        1、將macro prep High-Q強陰離子交換填料混勻,吸取16 ml于小燒杯中,靜置待填料沉降至燒杯底部,吸取并棄去上清。

        2、在燒杯中加入4倍體積的ddH2O,混勻,靜置,沉降后去上清。重復2次以充分洗去保存填料中的乙醇。

        3、在空柱中加入柱體積10%的裝柱緩沖液,靜置除去可能存在于柱壁和柱底部薄膜上的氣泡。

        4、以1:1(v/v)比例在燒杯中加入裝柱緩沖液(20 mM sodium phosphate,pH 7.0,1 M NaCl),混勻。用玻璃棒引流加入至柱中,并用裝柱緩沖液填滿剩余柱體積。靜置30 min。

        5、待填料均沉降至柱底部后,將適配器以較小的傾斜角度插入至柱中填料頂部。

        (1)打開柱低端開口,以最大流速10 ml/min泵入裝柱緩沖液,壓實填料。

        (2)緩慢降低緩沖液的流速,并將裝柱緩沖液更換成結合緩沖液(20 mM sodium phosphate,pH 7.0)。

        (3)設定蛋白純化程序,使用15倍柱體積緩沖液線性梯度洗脫目的蛋白。

        (4)收集流出液,進行SDS-PAGE檢測。

        (注意:所有層析所需的溶液以及蛋白樣品都需要使用0.22μm的濾膜過濾,少量的溶液或蛋白樣品需要可使用針頭濾器,大量的溶液需要使用506的溶劑過濾器進行過濾。)




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